Что скрывается под маской бактериального вагиноза?


DOI: https://dx.doi.org/10.18565/pharmateca.2021.8.104-111

И.Г. Афанасьева, И.О. Малова

Кафедра дерматовенерологии и косметологии, Иркутский государственный медицинский университет, Иркутск, Россия
Обоснование. Еще совсем недавно бактериальный вагиноз (БВ) считали «легким» заболеванием, протекающим как изолированный процесс в организме женщины. Однако в последние годы доказано развитие многочисленных и серьезных осложнений, в т.ч. увеличение риска заражения инфекциями, передаваемыми половым путем (ИППП).
Цель исследования: оценка встречаемости ИППП у женщин репродуктивного возраста с бессимптомно протекающим БВ, проходящих медицинский профилактический осмотр (группа низкого риска по ИППП).
Методы. В ретроспективном поперечном исследовании оценивалась взаимосвязь бессимптомного БВ и безусловных патогенов урогенитального тракта. В исследование включены 115 пациенток репродуктивного возраста с клинически и лабораторно подтвержденным бессимптомным БВ, обратившихся на медицинский осмотр и не имевших жалоб; средний возраст – 28,7±6,1 года. Перед включением в исследование всем пациенткам выполнены микроскопическое исследование отделяемого из влагалища, цервикального канала, уретры; пробы из цервикального канала на репродуктивно значимые инфекции методом амплификации нуклеиновых кислот; количественная оценка условно-патогенной микробиоты методом ПЦР в режиме реального времени c диагностической системой «Фемофлор-16».
Результаты. Облигатные патогены у женщин с бессимптомным БВ были обнаружены в 53 (46,1%) случаях, в т.ч. Human рapilloma virus – у 25, Chlamydia trachomatis – у 20, Mycoplasma genitalium – у 18, Trichomonas vaginalis – у 5, Neisseria gonorrhoeae –
у 2. Проведено сравнение микробиоценоза влагалища в зависимости от выявленных ИППП. Установлено значимое снижение количества лактобацилл на фоне избыточного роста анаэробной микробиоты во всех группах. Выявлены совпадения биотопов в группах по одному микроорганизму и более.
Заключение. Результаты настоящего исследования подтверждают, что женщины репродуктивного возраста с бессимптомным БВ, проходящие медицинский осмотр, нуждаются в дополнительном обследовании на наличие облигатных патогенов. Это будет важной стратегией для улучшения контроля над ИППП.

Литература


1. Кира Е.Ф. Бактериальный вагиноз. М.: 2012.


2. Kenyon C., Colebunders R., Crucitti T. The global epidemiology of bacterial vaginosis: a systematic review. Am J Obstet & Gynecol. 2013;209(6):505–23. Doi: 10.1016/j.ajog.2013.05.006.


3. Donders G.G., Zodzika J., Rezeberga D. Treatment of bacterial vaginosis: what we have and what we miss. Expert Opin Pharmacother. 2014;15(5):645–57. Doi: 10.1517/14656566.2014.881800.


4. Srinivasan S., Morgan M.T., Fiedler T.L., et al. Metabolic signatures of bacterial vaginosis. mBio. 2015;6(2):e00204-15. Doi: 10.1128/mBio.00204-15.


5. Schwebke J.R., Muzny C.A., Josey W.E. Role of Gardnerella vaginalis in the pathogenesis of bacterial vaginosis: a conceptual model. J Infect Dis. 2014;210(3):338–43. Doi: 10.1093/infdis/jiu089.


6. Shipitsyna E., Krysanova A., Khayrullina G., et al. Quantitation of all Four Gardnerella vaginalis Clades Detects Abnormal Vaginal Microbiota Characteristic of Bacterial Vaginosis More Accurately than Putative G. vaginalis Sialidase A Gene Count. Mol Diagn Ther. 2019;23(1):139–47. Doi: 10.1007/s40291-019-00382-5.


7. Hickey R.J., Forney L.J. Gardnerella vaginalis does not always cause bacterial vaginosis. J Infect Dis. 2014;210(10):1682–83. Doi: 10.1093/infdis/jiu303.


8. Jespers V., van de Wijgert J., Cools P., et al. The significance of Lactobacillus crispatus and L. vaginalis for vaginal health and the negative effect of recent sex: a cross-sectional descriptive study across groups of African women. BMC Infect Dis. 2015;15:115. Doi: 10.1186/s12879-015-0825-z.


9. Santiago G.L., Tency I., Verstraelen H., et al. Longitudinal qPCR study of the dynamics of L. crispatus, L. iners, A. vaginae, (sialidase positive) G. vaginalis, and P. bivia in the vagina. PLoS One. 2012;7(9):e45281. Doi: 10.1371/journal.pone.0045281.


10. Vaneechoutte M. Lactobacillus iners, the unusual suspect. Res Microbiol. 2017;168(9-10):826–836. Doi: 10.1016/j.resmic.2017.09.003.


11. Rampersaud R., Planet P.J., Randis T.M., et al. Inerolysin, a cholesterol-dependent cytolysin produced by Lactobacillus iners. J Bacteriol. 2011;193(5):1034–41. Doi: 10.1128/JB.00694-10.


12. Tachedjian G., Aldunate M., Bradshaw C.S., et al. The role of lactic acid production by probiotic Lactobacillus species in vaginal health. Res Microbiol. 2017;168(9–10):782–92. Doi: 10.1016/j.resmic.2017.04.001.


13. Kashet E.R. Bioenergetics of lactic acid bacteria: cytoplasmic pH and osmotolerance. FEMS Microbiol Lett. 1987;46:233-44.


14. Alakomi H.L., Skyttä E., Saarela M., et al. Lactic acid permeabilizes gram-negative bacteria by disrupting the outer membrane. Appl Environ Microbiol. 2000;66(5):2001–5. Doi: 10.1128/aem.66.5.2001-2005.2000.


15. van de Wijgert J.H., Borgdorff H., Verhelst R., et al. The vaginal microbiota: what have we learned after a decade of molecular characterization? PLoS One. 2014;9(8):e105998. Doi: 10.1371/journal.pone.0105998.


16. Nardini P., Ñahui Palomino R.A., Parolin C., et al. Lactobacillus crispatus inhibits the infectivity of Chlamydia trachomatis elementary bodies, in vitro study. Sci Rep. 2016;6:29024. Doi: 10.1038/srep29024.


17. Breshears L.M., Edwards V.L., Ravel J., et al. Lactobacillus crispatus inhibits growth of Gardnerella vaginalis and Neisseria gonorrhoeae on a porcine vaginal mucosa model. BMC Microbiol. 2015;15:276. Doi: 10.1186/s12866-015-0608-0.


18. Sobel J.D. Bacterial vaginosis. Annu Rev Med. 2000;51:349–56. Doi: 10.1146/annurev.med.51.1.349.


19. Shipitsyna E., Khusnutdinova T., Budilovskaya O., et al. Bacterial vaginosis-associated vaginal microbiota is an age-independent risk factor for Chlamydia trachomatis, Mycoplasma genitalium and Trichomonas vaginalis infections in low-risk women, St. Petersburg, Russia. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2020;39(7):1221–30. Doi: 10.1007/s10096-020-03831-w.


20. Brotman R.M., Klebanoff M.A., Nansel T.R., et al. Bacterial vaginosis assessed by gram stain and diminished colonization resistance to incident gonococcal, chlamydial, and trichomonal genital infection. J Infect Dis. 2010;202(12):1907–15. Doi: 10. 1086/657320.


21. Wurapa E., Sateren W.B., Morris S., et al. Bacterial vaginosis: a synthesis of the literature on etiology, prevalence, risk factors, and relationship with chlamydia and gonorrhea infections. Mil Med Res. 2016;3:4. Doi: 10.1186/s40779-016-0074-5.


22. Cerca N., Vaneechoutte M., Guschin A., et al. Polymicrobial infections and biofilms in women’s health: Gahro Expert Group Meeting Report. Res Microbiol. 2017;168(9–10):902–4. Doi: 10.1016/j.resmic.2017.07.002.


23. Swidsinski A., Loening-Baucke V., Mendling W., et al. Infection through structured polymicrobial Gardnerella biofilms (StPM-GB). Histol Histopathol 2014;29:567–87. Doi: 10.14670/HH-29.10.567.


24. Kenyon C.R, Delva W., Brotman R.M. Differential sexual network connectivity offers a parsimonious explanation for population-level variations in the prevalence of bacterial vaginosis: a data-driven, model-supported hypothesis. BMC Womens Health. 2019;19(1):8. Doi: 10.1186/s12905-018-0703-0.


25. Bautista C.T., Wurapa E., Sateren W.B., et al. Bacterial vaginosis: a synthesis of the literature on etiology, prevalence, risk factors, and relationship with chlamydia and gonorrhea infections. Mil Med Res. 2016;3:4. Doi: 10.1186/s40779-016-0074-5.


26. Swidsinski A., Mendling W., Loening-Baucke V., et al. Adherent biofilms in bacterial vaginosis. Obstet Gynecol. 2005;106(5 Pt 1):1013–23. Doi: 10.1097/01.AOG.0000183594.45524.d2.


27. Masson L., Barnabas S., Deese J., et al. Inflammatory cytokine biomarkers of asymptomatic sexually transmitted infections and vaginal dysbiosis: a multicentre validation study. Sex Transm Infect. 2019;95(1):5–12. Doi: 10.1136/sextrans-2017-053506.


28. Fichorova R., Fraga J., Rappelli P., Fiori P.L. Trichomonas vaginalis infection in symbiosis with Trichomonasvirus and Mycoplasma. Res Microbiol. 2017;168(9–10):882–91. Doi: 10.1016/j.resmic.2017.03.005.


29. Fettweis J.M., Serrano M.G., Huang B., et al. An emerging mycoplasma associated with trichomoniasis, vaginal infection and disease. PLoS One. 2014;9(10):e110943. Doi: 10.1371/journal.pone.0110943.


30. Martin D.H., Zozaya M., Lillis R.A., et al. Unique vaginal microbiota that includes an unknown Mycoplasma-like organism is associated with Trichomonas vaginalis infection. J Infect Dis. 2013;207(12):1922–31. Doi: 10.1093/infdis/jit100.


Об авторах / Для корреспонденции


Автор для связи: И.Г. Афанасьева, к.м.н., доцент кафедры дерматовенерологии и косметологии, Иркутский государственный медицинский университет, Клиника кожных болезней, Иркутск, Россия; irishaaf@yandex.ru 
Адрес: 664025, Россия, Иркутск, ул. Российская, 16


ORCID:
И.О. Малова, https://orcid.org/0000-0002-5078-1955
И.Г. Афанасьева, https://orcid.org/0000-0001-5425-2826


Похожие статьи


Бионика Медиа