Современные аспекты антимикробной терапии смешанных анаэробно-аэробных инфекций в абдоминальной хирургии


М.Н. Зубков

Современные аспекты антимикробной
терапии смешанных анаэробно-аэробных инфекций в абдоминальной хирургии

Важной особенностью интраабдоминальных хирургических инфекций является наличие анаэробного компонента в полимикробной этиологии, что требует обязательного применения препаратов с антианаэробной активностью в схемах комбинированной или монотерапии. Ингибиторозащищенные аминопенициллины (ампициллин/сульбактам) и цефоперазон/сульбактам, а также метронидазол сохраняют свою активность против разных групп анаэробов (исключение составляют актиномицеты) и имеет целый ряд преимуществ по сравнению с другими антианаэробными препаратами. Перспективным препаратом для проведения монотерапии смешанных анаэробно-аэробных инфекций является моксифлоксацин.

Смешанные анаэробно–аэробные инфекции занимают ведущее положение в хирургической патологии органов брюшной, грудной полостей и мягких тканей, а их удельный вес достигает 70–80 %. При этом видовой состав изолятов близок к нормальной микрофлоре пораженного органа или его области [1]. К числу анаэробных бактерий относятся разные по морфологии микроорганизмы (табл. 1), способные удовлетворять свои энергетические потребности в отсутствии кислорода (не более 0,5 % для строгих анаэробов и от 2 до 8 % для умеренно–облигатных анаэробов) [2]. Они формируют нормальную микрофлору человека, и в отдельных локусах (прямая кишка, ротовая полость) их количество на несколько порядков превышает число аэробных (Pseudomonas aeruginosa, Acinetobacter spp. и др.) и факультативно анаэробных (семейство Enterobacteriaceae, Staphylococcus spp., Streptococcus spp., Enterococcus spp. и др.) микроорганизмов (табл. 2).

Экзогенные анаэробные моноинфекции встречаются относительно редко и в основном связаны с клостридиями. Обычно это пищевые отравления, ботулизм, столбняк, гастроэнтерит и некротический энтерит, мионекроз. У больных с обструктивными или перфоративными повреждениями терминальных отделов подвздошной и толстой кишки Clostridium spp. (в первую очередь, C. perfringens и C. septicum) могут участвовать в развитии перитонита, интраабдоминального абсцесса и сепсиса. Бактериемия, обусловленная C. septicum, наблюдается у 70–85 % пациентов с карциномой толстой кишки, лейкемией или лимфомой [32]. Токсигенные штаммы C. difficile, колонизирующие толстый кишечник, вызывают псевдомембранозный колит, который лечится приемом внутрь метронидазола или ванкомицина. Бензилпенициллин остается препаратом выбора при клостридиальной инфекции. Редко возникающая к нему резистентность у C. perfringens связана с модификацией ПСБ 1 (пенициллинсвязывающего белка) [33]. Резистентность заметно выше у C. ramnosum, C. clostridiforme, C. butiricum, продуцирующих индуцибельные бета–лактамазы [34]. Высоко активны и другие бета–лактамы: пиперациллин, ампициллин/сульбактам, амоксициллин/клавуланат, карбапенемы; из препаратов других групп – метронидазол, хлорамфеникол.

Значение неспороносных грамположительных анаэробов в патологии человека часто недооценивается, так как они очень чувствительны к действию кислорода даже при использовании транспортных сред и в отличие от других анаэробов при посеве растут более 48 часов. Среди палочковидных бактерий Actinomyces spp. являются наиболее типичными условными патогенами. Они входят в состав микрофлоры ротовой полости, фекалий и могут вызывать гастроинтестинальные инфекции, а также актиномикозы разной локализации, чаще экзогенного происхождения [3, 4]. Bifidobacterium spp. и Lactobacillus spp. колонизируют толстый кишечник, где снижение их пороговой концентрации сопровождается явлениями дисбактериоза. Применительно к интраабдоминальной патологии они выделяются при абсцессах толстого и нижних отделов тонкого кишечника, встречаются при перитонитах, высеваются из крови при абдоминальном сепсисе [5, 6, 10, 11]. Абсцессы кишечника могут быть связаны с Eggerthella spp., Pseudoramibacter spp., Eubacterium spp., входящими в состав нормальной микрофлоры толстой кишки [8, 9, 12]. Turicibacter spp. были выделены из крови при остром аппендиците [13].

Большинство палочковидных анаэробов чувствительны к карбокси– и уреидопенициллинам, цефокситину, карбапенемам и хлорамфениколу. Метронидазол не активен против Actinomyces spp. (МПК90 варьирует от 25 до >125 мкг/мл и более), а 92 % культур Eubacterium spp. сохраняют к нему чувствительность [35].

Среди ГПАК в фекалиях 20–38 % приходится на долю изолятов Finegoldia magna (ранее – Peptostreptococcus magnum), удельный вес которых среди всех копрокультур анаэробов составляет 5–12 % [15]. Они могут вызывать интраабдоминальные абсцессы, так же как Micromonas micros и Anaerococcus prevotii (ранее принадлежали к Peptostreptococcus spp. [18, 19]), Peptostreptococcus anaerobius (единственный вид, представляющий в настоящее время одноименный род; составляет до 13–18 % от ГПАК в фекалиях [14, 16]) и Peptoniphilus spp. (ранее Peptostreptococcus spp. [14]), выделенные и при перитоните. Peptococcus niger и Ruminococcus spp., являясь частью нормофлоры толстого кишечника, выделяются при ректальных абсцессах, перитоните и абдоминальном сепсисе [14, 17].

До 96 % ГПКА чувствительны к  бета–лактамам, несколько ниже их чувствительность к клиндамицину и метронидазолу (84 и 88 % соответственно) [36].

Грамотрицательные анаэробы выделяются более чем у 50 % больных при неспецифических инфекциях. Среди них основное место занимает группа Bacteroides fragilis, включающая разные виды, из которых наибольшее клиническое значение имеют B. fragilis и B. thetaiotaomicron, прежде всего при абдоминальных инфекциях, а также инфекциях других локализаций. Bacteroides fragilis превалируют среди нормальной микрофлоры желудочно–кишечного тракта, в незначительном количестве встречаются в нижних отделах генитального тракта и практически отсутствуют в ротовой полости и среди микрофлоры верхних дыхательных путей. Они продуцируют бета–лактамазы, что определяет профиль их антибиотикоустойчивости [19, 20].

Так называемые пигментированные грамотрицательные анаэробные палочки (прежде относились к группе Bacteroides melaninogenicus) подразделяются на сахаролитические виды, составляющие род Prevotrlla, и несахаролитические – род Porphyrpmonas. Часть видов этих бактерий представляют нормальную микрофлору кишечного тракта и могут вызывать интраабдоминальные инфекции, сопровождающиеся бактериемией. Из них P. bivia и P. distens представляют интерес в связи с устойчивостью к природным пенициллинам, аминопенициллинам, цефалоспоринам [37]. Fusobacterium spp. могут явиться причиной интраабдоминальных абсцессов, бактериемии [24]. Прочие грамотрицательные палочковидные анаэробы играют гораздо менее значительную роль при интраабдоминальных инфекциях (табл. 1).

Грамотрицательные кокки – Acidaminococcus spp., Megasphaera spp., Veillonella spp. – являются частью фекальной флоры и ротовой полости и очень редко вызывают интраабдоминальные инфекции [29, 30, 38].

Отличительной особенностью неспецифических анаэробных инфекций является их полимикробная этиология с участием аэробных и факультативно анаэробных бактерий – представителей нормальной микрофлоры. Это в значительной мере усугубляет и без того сложную проблему этиологической диагностики анаэробных инфекций. Без соблюдения специальных требований к взятию материала, условий его транспортировки и использования отработанной технологии изучения в лаборатории трудно оценить истинную роль анаэробов в патологии. Достаточно сказать, что удлинение сроков между получением материала и его посевом в анаэробных условиях губительно сказывается на жизнедеятельности микроорганизмов. Так как исследование на анаэробы требует дополнительных временных и материальных затрат, оно не всегда доступно в рутинной практике, поскольку нередко трудно соблюсти баланс между получением всеобъемлющей микробиологической информации в изучаемом образце и сроками проведения анализа, когда его результаты еще не утратили значение.

Поскольку антианаэробная терапия чаще всего проводится эмпирически, важно знать тенденции формирования резистентности клинических изолятов к антимикробным препаратам (табл. 3). Европейские данные по группе Bacteroides fragilis [40], как и результаты российских исследователей [39], свидетельствуют о неэффективности ампициллина и снижении активности цефокситина (антибиотик из группы цефамицинов, отличающихся антианаэробным спектром), более выраженном в нашей стране, несмотря на то, что этот препарат не применяется в отечественной практике. Обращает на себя внимание рост устойчивости бактероидов к клиндамицину, единичные штаммы резистентны к имипенему. Ингибиторозащищенные аминопенициллины (в данном случае ампициллин/сульбактам) и цефоперазон/сульбактам, а также метронидазол сохраняют свою активность против разных групп анаэробов (как указывалось выше, исключение составляют актиномицеты) и имеют целый ряд преимуществ по сравнению с другими антианаэробными препаратами.

Обладая бактерицидной активностью, метронидазол хорошо сочетается с бета–лактамами, аминогликозидами, фторхинолонами, макролидами, ванкомицином, сульфаниламидами, ко–тримоксазолом, что особенно важно при комбинированной терапии инфекций полимикробной этиологии, каковыми и являются интраабдоминальные инфекции. При тяжелых формах инфекций с участием анаэробов возможна ступенчатая терапия, хотя и изначальное проведение пероральной терапии достаточно эффективно ввиду высокой биодоступности метронидазола. Хорошее проникновение в органы и ткани (70–94 % от сывороточных концентраций [41]) выгодно отличает метронидазол от других антимикробных средств и позволяет применять его при любых формах интраабдоминальной инфекции, в т. ч. при панкреонекрозах, где в очаге воспаления создаются концентрации (наряду с уровнями фторхинолонов и карбапенемов), превышающие МПК для большинства возбудителей [42]. При многоцентровом рандомизированном двойном слепом исследовании эффективности лечения тяжелых интраабдоминальных инфекций комбинацией метронидазола с ципрофлоксацином при инфузионной и ступенчатой терапии в сравнении с имипенемом были получены одинаковые показатели исходов заболеваний (82–84 % излечения) [43], но фармакоэкономические преимущества были на стороне ступенчатой терапии [44]. Обычная практика применения метронидазола при тяжелых интраабдоминальных инфекциях подразумевает его комбинацию с ципрофлоксацином, либо с цефалоспоринами III–IV поколений, либо с аминогликозидами (амикацин, нетромицин).

Из других антианаэробных лекарственных средств наиболее часто используют ингибиторзащищенные аминопенициллины (амоксициллин/клавуланат и ампициллин/сульбактам), пиперациллин/тазобактам, линкосамиды в комбинации с антибиотиками широкого спектра, карбапенемы в качестве монотерапии. В целом ряде сравнительных рандомизированных исследований доказана высокая клиническая и бактериологическая эффективность цефоперазона/сульбактама в режиме монотерапии при разных формах интраабдоминальной инфекции, показаны его преимущества перед комбинацией аминогликозида с линкосамидом при сопоставимости результатов лечения с имипенемом (о чем мы писали ранее [45]).

Перспективным препаратом для проведения монотерапии смешанных анаэробно–аэробных инфекций является моксифлоксацин. При изучении его активности в отношении 350 аэробных и 550 анаэробных изолятов у пациентов с инфекциями органов брюшной полости антимикробный эффект был получен соответственно в 90,8 и 97,1 % случаях, что позволяет рассматривать этот препарат в качестве возможного эффективного средства для лечения хирургических инфекций, вызванных микробными ассоциациями [46]. В сравнительном рандомизированном исследовании показано, что лечение осложненных абдоминальных инфекций моксифлоксацином (сначала внутривенное, затем пероральное) сопровождалось частотой клинического излечения, сопоставимой с показателями, полученными при внутривенном введении пиперациллина/тазобактама с последующим переходом на пероральный прием амоксициллина/клавуланата [47].

Таким образом, особенностью интраабдоминальных хирургических инфекций является наличие анаэробного компонента в полимикробной этиологии, что требует обязательного применения препаратов с антианаэробной активностью в схемах комбинированной или монотерапии в ранние сроки независимо от получения результатов микробиологического исследования.




Литература






  1. Зубков М.Н., Меньшиков Д.Д., Гугуцидзе Е.Н. и др. Микробиологическая диагностика смешанных анаэробно-аэробных инфекций в хирургии // Антибиотики и химиотерапия. 1995. № 40 (2). С. 46–50.


  2. Loesche WR. Oxygen sensitivity of various anaerobic bacteria. Appl Microbiol 1969;18:723–27.


  3. Funke G, Alvarez N, Pascual E, et al. Actinomyces europeus sp. nov., isolated from human clinical specimens. Int J Syst Bacteriol 1997;47:687–92.


  4. Smego D. Actinomycosis. Clin Infect Dis 1998;26:1255–63.


  5. Brook I. Isolation of non-sporing anaerobic rods from infections in children. J Med Microbiol 1996;45:21–26.


  6. Ha GY, Yang CH, Kim H, et al. Case of sepsis caused by Bifidobacterium longum. J Clin Microbiol 1999;37:1227–28.


  7. Skerman VBD, McGowan V, Sneath PHA, editors. Approved Lists of Bacterial Names. Int J Syst Bacteriol 1980;30:225–420.


  8. Kageyama A, Benno Y, Nakase T. Phylogenetic evidence for the transfer of Eubacterium lentum to the genus Eggerthella as Eggerthella lenta gen. nov., comb. nov. Int J Bacteriol 1999; 49:1725–32.


  9. Downes J, Mark A, Spratt DA, et al. Characterization of Eubacterium-like strains isolated from oral infections. J Med Microbiol 2001; 50:947–51.


  10. Chomarat M, Espinouse D. Lactobacillus rhamosus septicemia in patients with prolonged aplasia receiving ceftazidime-vancomycin. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 1991;10:44.


  11. Bantar CE, Relloso S, Rodriguez CF, et al. Abscess caused by vancomycin-resistant Lactobacillus confusus. J Clin Microbiol 1991;29: 2063–64.


  12. Willems A, Collins MD. Phylogenetic relationships of the genera Acetobacterium and Eubacterium sensu stricto and reclassification of Eubacterium alactolyticum as Pseudoramibacter alactolyticus gen. nov., comb. nov. Int J Syst Bacteriol 1996; 46:1083–87.


  13. Bosshard PP, Zbinden R, Altwegg M. Turicibacter sangvinis gen. nov., sp. nov., a novel anaerobic. Int J Syst Evol Microbiol 2002;52: 1263–66.


  14. Ezaki T, Kawamura Y, Li N, et al. Proposal of the genera Anaerococcus gen. nov., Peptoniphilus gen. nov. and Gallicola gen. nov. for members of the genus Peptostreptococcus. Int J Syst Evol Microbiol 2001;51:1521–28.


  15. Murdoch DA, Shah HN. Reclassification of Peptostreptococcus magnus (Prevot 1933) Holdeman and Moore 1972 as Finegoldia magna comb. nov. and Peptostreptococcus micros (Prevot 1933) Smith 1957 as Micromonas micros comb. nov. Anaerobe 1999;5:555–59.


  16. Зубков М.Н., Меньшиков Д.Д., Васина Т.А. и др. Микробиологическая диагностика и антибактериальная терапия неспорообразующих анаэробных инфекций при неотложных состояниях // Вестник РАМН. 1996. № (2). С. 49–52.


  17. Willmes A, Collins MD. Phylogenic analysis of Ruminococcus flavifaciens, the type species of the genus Ruminococcus, does not support the reclassification of Streptococcus hansenii and Peptostreptococcus products as ruminococci. Int J Syst Bacteriol 1995;45:572–75.


  18. Shah HN, Collins MD. Reclassification of Bacteroides frucosus Veillon and Zuber in a new genus Anaerorhabdus, as Anaerorhabdus frucosus cjmb. nov. Int J Syst Bacteriol 1986;36:573–76.


  19. Rasmussen BA, Bush K, Tally FP. Antimicrobial resistance in Bacteroides. Clin Infect Dis 1993;16(S4):390–400.


  20. De Carvallo CB, Moreria JL, Ferreria MC. Epidemiology and antimicrobial resistance of B.fragilis group organisms isolated from clinical specimens and human intestinal microbiota. Rev Inst Med Trop Sao Paulo 1996;38: 329–35.


  21. Kasten MJ, Rosenblatt JE, Gustafson DR. Bilophila wadsworthia bacteremia in two patients with haepatic abscess. J Clin Microbiol 1992;30: 2502–03.


  22. Tee W, Dyall-Smith M, Woods W, et al. Probable new species of Desulfovibrio isolated from a pyogenic liver abscess. J Clin Microbiol 1996;34: 1760–64.


  23. McDougall R, Robson D, Tee W. Bacteremia caused by a recently described novel Desulfovibrio species. J Clin Microbiol 1997; 35: 1805–08.


  24. Gerge WL, Kirbi BD, Sutter VL. Gram-negative anaerobic bacilli: there role in infection and patterns of susceptibility to antibiotic agents. II Little-known Fusobacterium species with miscellaneous genera. Rev Infrct Dis 1981;3:599–626.


  25. Shah HN, Collins MD. Proposal for reclassification of Bacteroides assacharolyticus, Bacteroides gingivalis, Bacteroides endodontalis in a new genus, Porphiromonas. Int J Syst Bacteriol 1988; 38:128–31.


  26. Shah HN, Collins MD. Prevotella, a new genus to include Bacteroides melaninogenicus and related species formerly classified in the genus Bacteroides. Int J Syst Bacteriol 1990;40: 205–08.


  27. Molitoris E, Wexler HM, Finegold SM. Sources and antimicrobial susceptibilities of Campilobacter gracilis and Sutturella wadaworthensis. Clin Infect Dis 1997;25(S2):264–65.


  28. Murray PR, Baron EI, Yorgensen IH, et al. Manual of Clinical Microbiology. 8th ed. Washington: ASM Press; 2003.


  29. Carlier JP, Marchandin H, Jumas-Bilak E, et al. Anaeroglobus geminatus gen. nov., sp. nov., a novel member of the family Veilonellaceae. Int J Syst Evol Microbiol 2002;52:983–86.


  30. Brancaccio M, Legendri GG. Megasphaera eldenii endocarditis. J Clin Microbiol 1979;10:72–74.


  31. Bartlett JG. Anaerobic bacteria: general concepts. In: Mandell JL, Douglas RJ, Bennett JE. Principles and practices of infectious diseases: Churchill Livingstone, N.Y., 1990; 3rd ed: 1828–48.


  32. Kornbluth AA, Danzig JB, Bernstein LH. Clostridium septicum infection and association malignancy. Medicine 1989;68:30–37.


  33. Sutter VL, Citron DM, Edelstein MA, et al. Wadsworth anaerobic bacteriology manual: Star Publishing Co., Belmont, Calif 1985.


  34. Baron EJ, Summanen P, Downes J, et al. Bilophila wadsworthia gen. nov., sp. nov., a unique gram-negative anaerobic rod recovered from appendicitis specimens and human faeces. J Gen Microbiol 1989;135:3405–11.


  35. Lynch E. Actinomyces pyogenes septic arthritis in a diabetic farmer. J Infect 1998;37: 71–73.


  36. Lynch E. Actinomyces pyogenes septic arthritis in a diabetic farmer. J Infect 1998;37: 71–73.


  37. Ha GY, Yang CH, Kim H, et al. Case of sepsis caused by Bifidobacterium longum. J Clin Microbiol 1999;37:1227–28.


  38. Marchandin H, Jumas-Bilak E, Gay B, et al. Phylogenetic analysis of some Sporomusa subbranch members isolated from human clinical specimens: description of Megasphaera micromuciformis sp. nov. Int J Syst Evol Microbiol 2003;53:547:53.


  39. Sidorenko SV, Rezvan SP, Tikchonova AS, et al. In vitro activity of ampicillin, cefoperazone, their combinations with sulbactam and other antimicrobials: survey of Russian isolates. Inern J Antimicrob Agents 1996;7:109–17.


  40. Hedberg M, Nord CE. Antimicrobial susceptibility of Bacteroides fragilis group isolates in Europe. Clin Microbiol Infect 2003;9:475–88.


  41. Freeman CD, Klutman NE, Lamp KC. Metronidazole. A therapeutic review and update. Drugs 1997;54:679–708.


  42. Bassi C, Pederzoli P, Vesentini S, et al. Behavior of antibiotics during human necrotising pancreatitis. Antimicrob Agents Chemother 1994; 38:830–36.


  43. Solomkin JS, Reinhart HH, Dellinger EP, et al. Results of randomized trial comparing sequential intravenous/oral treatment with ciprofloxacin plus metronidazole to imipenem/cilastatin for intra-abdominal infections. Ann Surg 1996; 223:303–15.


  44. Walters DJ, Solomkin JS, Paladino JA. Cost effectiveness of ciprofloxacin plus metronidazole versus imipenem-cilastatin in the treatment of intra-abdominal infections. Pharmacoeconomics 1999;16:551–61.


  45. Зубков МН. Клинико-фармакологическое обоснование применения ингибиторозащищенного цефалоспорина при тяжелых хирургических инфекциях // Фарматека. 2003. № 15. С. 1–6.


  46. Edmiston CE, Krepel CJ, Seabrook GR, et al. Эффективность моксифлоксацина in vitro в отношении 900 аэробных и анаэробных изолятов у пациентов с инфекциями органов брюшной полости и с синдромом диабетической стопы. Antimicrob Agents Chemother 2004;48: 1012–16.


  47. Salivan S. Моксифлоксацин становится стандартным методом лечения осложненных инфекций. Inpharma 2005;1472:13–14.





Бионика Медиа