Показатели иммунного статуса в крови больных в зависимости от стадии атрофического гастрита по системе OLGA


DOI: https://dx.doi.org/10.18565/pharmateca.2020.2.31-36

В.В. Цуканов, А.В. Васютин, Ю.Л. Тонких, О.В. Смирнова, А.А. Синяков, Н.Г. Елманова

Федеральный исследовательский центр «Красноярский научный центр Сибирского отделения Российской академии наук» (ФИЦ КНЦ СО РАН), «Научно-исследовательский институт медицинских проблем Севера» (НИИ МПС), Красноярск, Россия
Актуальность. Создание градации предраковых изменений направлено на совершенствование вторичной профилактики новообразований. Этому способствует поиск факторов, позволяющих стратифицировать выраженность проявлений атрофического гастрита (АГ).
Цель исследования. Изучение показателей иммунного статуса в крови больных в зависимости от стадии АГ по системе OLGA.
Методы. В исследование были включены 125 пациентов в возрасте от 18 до 80 лет: 52 практически здоровых добровольца
(26 мужчин и 26 женщин, средний возраст – 48,2±4,0 года), проходящих плановую диспансеризацию в НИИ МПС ФИЦ КНЦ СО РАН, и 73 больных АГ (38 мужчин и 35 женщин, средний возраст – 49,9±4,6 года). Здоровые пациенты определялась на основании отсутствия гастроэнтерологического анамнеза и клинических симптомов заболеваний органов пищеварения, содержания пепсиногена-1 (ПГ-1) в крови >50 мкг/л, соотношения ПГ-1/ПГ-2 >3. У всех пациентов результат определения инфекции Helicobacter pylori был положительный. Диагноз АГ устанавливался врачом-гастроэнтерологом на основании клинического обследования, наличия инфекции H. pylori и атрофии слизистой оболочки желудка при гистологическом исследовании. Всем пациентам проведены стандартный клинический осмотр врача-гастроэнтеролога и лабораторно-инструментальные исследования. Фиброэзофагогастродуоденоскопия с забором 5 биоптатов из слизистой оболочки желудка осуществлена 73 пациентам с АГ. Оценка АГ осуществлена по системе OLGA в гистологических препаратах, окрашенных гематоксилином и эозином. H. pylori определен гистологическим методом в препаратах, окрашенных по Романовскому–Гимзе. Исследование иммунного статуса включило определение количества лейкоцитов и лимфоцитов и показателей клеточного иммунитета методом непрямой иммунофлуоресценции лимфоцитов с помощью моноклональных антител к CD3, CD4, CD8, CD16, CD19 (ТОО «Сорбент», Москва).
Результаты. У больных хроническим АГ III–IV стадий по системе OLGA по сравнению со здоровыми лицами отмечено угнетение Т-клеточного звена иммунитета, проявляющееся снижением абсолютного количества лейкоцитов и лимфоцитов; уменьшением абсолютного и относительного содержания зрелых Т-лимфоцитов, CD4+-клеток, иммунорегуляторного индекса (CD4+/CD8+) и NK-клеток. Нарушение клеточного звена иммунитета было ассоциировано с увеличением стадии атрофии по системе OLGA.
Заключение. Комбинация применения морфологической системы OLGA с определением иммунных показателей повышает возможность стратификации АГ по определению риска развития рака желудка.
Ключевые слова: атрофический гастрит, OLGA, клеточный иммунитет, Т-лимфоциты, канцерогенез

Введение

Рак желудка остается одной из главных проблем здравоохранения в различных странах мира [1]. В 2018 г. на планете было зарегистрировано более 1 млн новых случаев и 783 тыс. смертей от этой патологии [2]. Отчетливой тенденции к снижению заболеваемости раком желудка до сих пор не отмечено [3]. В связи с этим предпринимаются большие усилия для решения этой проблемы [4]. Одним из наиболее очевидных решений в этом плане служит создание градации предраковых изменений в желудке [5] для совершенствования вторичной профилактики новообразований [6]. Наша работа направлена на поиск факторов, позволяющих стратифицировать выраженность проявлений атрофического гастрита (АГ).

Цель исследования: изучение показателей иммунного статуса в крови больных в зависимости от стадии АГ по системе OLGA.

Методы

Работа выполнена на базе НИИ медицинских проблем Севера ФИЦ КНЦ СО РАН. В исследование были включены 125 пациентов в возрасте от 18 до 80 лет: 52 практически здоровых добровольцев и 73 больных АГ.

Критерии исключения из исследования: наличие в анамнезе выраженных хронических заболеваний органов дыхания, сердечно-сосудистой системы, органов пищеварения, мочеполовой, нервной и эндокринной систем, опорно-двигательного аппарата, диффузных болезней соединительной ткани, гематологических заболеваний, новообразований, ВИЧ-инфекции, туберкулеза; любые сопутствующие острые и хронические заболевания в фазе обострения; отказ от участия в исследовании.

Контрольная группа была сформирована из 52 здоровых лиц (26 мужчин и 26 женщин, средний возраст – 48,2±4,0 года), проходивших плановую диспансеризацию в НИИ МПС ФИЦ КНЦ СО РАН. Здоровые пациенты определены на основании отсутствия гастроэнтерологического анамнеза и клинических симптомов заболеваний органов пищеварения, содержания пепсиногена-1 (ПГ-1) в крови >50 мкг/л, соотношения ПГ-1/ПГ-2 >3.

У всех пациентов результат определения инфекции Helicobacter pylori был положительным.

Вторая группа состояла из 73 пациентов (38 мужчин и 35 женщин, средний возраст – 49,9±4,6 года) с АГ тела желудка, обследованных в клинике НИИ МПС ФИЦ КНЦ СО РАН. Диагноз установлен врачом-гастроэнтерологом на основании клинического обследования, наличия инфекции H. pylori и атрофии слизистой оболочки желудка при гистологическом исследовании.

Исследование проведено с разрешения этического комитета НИИ МПС ФИЦ КНЦ СО РАН (протокол № 11 от 11.11.2013). В работе с обследованными пациентами соблюдались этические принципы, предъявляемые ст. 24 Конституции РФ и Хельсинкской декларацией Всемирной медицинской ассоциации. Каждый участник подписывал форму информированного согласия на обследование, подтвердившее его добровольное участие в исследовании.

Всем пациентам проведен стандартный клинический осмотр врача-гастроэнтеролога, результаты которого регистрировались в специально разработанной анкете. Анкета содержала вопросы, в которых фиксировались жалобы, анамнез, результаты объективного осмотра, анализировались назначения. В дизайн исследования для уточнения наличия сопутствующей патологии входили обследования по стандарту для пациентов с гастритом, включившие развернутый и биохимический анализы крови, общий анализ мочи, анализ кала на скрытую кровь, на яйца глистов и копрологическое исследование, а также ультразвуковое исследование органов брюшной полости. Лабораторные анализы проведены в клинико-диагностической лаборатории НИИ медицинских проблем Севера.

Пациентам контрольной группы проведено определение пепсиногенов и антител к H. pylori в сыворотке крови с помощью иммуноферментного анализа (ИФА) на ИФА-анализаторе «СтатФакс-3000» с использованием тест-системы «Гастропанель» («Биохит», Финляндия). Нормальными считали уровень ПГ-1 >50 мкг/л и соотношение ПГ-1/ПГ-2 >3. Титры антител к H. pylori ≥30 EIU считали положительным, <30 EIU – отрицательным результатом определения H. pylori.

Фиброэзофагогастродуоденоскопия (на аппарате Olimpus-10) и морфологическое исследование биоптатов желудка осуществлены 73 пациентам с АГ на базе клинико-диагностического отделения НИИ медицинских проблем Севера. Во время эндоскопического исследования осуществлен забор пяти биоптатов из слизистой оболочки желудка – два кусочка из антрального отдела, один из передней стенки, один из задней стенки тела желудка и один биоптат из incisura angularis. Оценка АГ осуществлена по системе OLGA [7] в гистологических препаратах, окрашенных гематоксилином и эозином. H. pylori определен гистологическим методом в препаратах, окрашенных по Романовскому–Гимзе.

Исследование иммунного статуса включило определение количества лейкоцитов и лимфоцитов, показателей клеточного иммунитета методом непрямой иммунофлуоресценции лимфоцитов с помощью моноклональных антител к CD3, CD4, CD8, CD16, CD19 (ТОО «Сорбент», Москва). Для дополнительной характеристики Т-клеточного звена иммунной системы вычислено соотношение (CD4+/CD8+).

По результатам исследования на персональном компьютере в пакете электронных таблиц MSExcel-2010 сформирована база данных. Статистическая обработка данных проведена с помощью пакетов прикладных программ Statistica for Windows 8.0 (StatSoftInc.; США, 2008) и Microsoft Excel, 2007 (Microsoft, США). Обработка полученных данных включила подсчет непараметрических данных: медиану (Me) и квартили (С25-С75). Статистическую значимость различий определяли с использованием критерия Манна–Уитни. Достоверным считался уровень значимости при р≤0,05.

Результаты

У пациентов с АГ III–IV стадий по системе OLGA отмечено уменьшение как общего количества лейкоцитов, так и абсолютного содержания лимфоцитов в крови по сравнению с контрольной группой (табл. 1). При этом определены достоверные различия между пациентами с атрофией I стадии по системе OLGA по сравнению с больными АГ IV стадии по системе OLGA относительно абсолютного содержания лейкоцитов (р=0,03) и лимфоцитов (р=0,006). Эти данные указывают на угнетение клеточного звена иммунитета у больных АГ.

33-1.jpg (198 KB)

CD3 служит маркером зрелых Т-лимфоцитов, в функции которого входит передача сигналов в клетку, а также стабилизация Т-клеточного рецептора на поверхности мембраны [8]. Относительные и абсолютные показатели CD3+-лимфоцитов в крови были значительно ниже у пациентов с АГ II–IV стадий по системе OLGA по сравнению с группой здоровых лиц, при этом количество Т-лимфоцитов было более низким у пациентов с более высокой стадией АГ по системе OLGA (табл. 1).

CD4+-лимфоциты (Т-хелперы) выполняют важную роль в клеточном и гуморальном иммунных ответах, главной их функцией считается активация других иммунных клеток и выделение цитокинов [9]. Нами было зарегистрировано снижение как абсолютного количества Т-хелперов в крови, так и их относительного содержания у пациентов с АГ III–IV стадий по системе OLGA по сравнению с контрольной группой (табл. 2). При этом имелись достоверные отличия между пациентами с атрофией I стадии по системе OLGA и больными АГ IV стадии по системе OLGA относительно абсолютного (р=0,001) и относительного (р=0,004) содержания Т-хелперов в крови.

34-1.jpg (200 KB)

CD8+-клетки (Т-киллеры или Т-цитотоксические клетки) – субпопуляция эффекторных Т-лимфоцитов, осуществляющих лизис поврежденных клеток организма (пораженные внутриклеточными паразитами и опухолевые клетки) [10]. По относительному содержанию CD8+-клеток в крови не обнаружено достоверных различий между пациентами со всеми стадиями АГ по системе OLGA и контрольной группой. Наблюдалось снижение абсолютного содержания CD8+-лимфоцитов у пациентов с АГ IV стадии по системе OLGA по сравнению со здоровыми лицами (табл. 2).

Важное значение в исследовании показателей иммунного статуса имеет иммунорегуляторный индекс, определяемый по соотношению CD4+/CD8+ (Т-хелперы/Т-киллеры). Этот коэффициент был равен 1,8 у лиц контрольной группы; 1,64 при атрофии I стадии по системе OLGA (р1-2=0,6), 1,47 при II стадии (р1-3=0,1); 1,26 при III стадии (р1-4=0,02) и 1,15 при IV стадии АГ по системе OLGA (р1-5=0,004; р2-5=0,03). Обнаруженные закономерности свидетельствуют об очевидном наличии иммунодефицита у пациентов с АГ по сравнению с контрольной группой, который усугубляется при увеличении стадии атрофии по системе OLGA.

Относительное содержание CD16+-клеток (натуральных киллеров, NK-клеток) было достоверно ниже у пациентов с атрофией IV стадии по системе OLGA по сравнению с контрольной группой (табл. 3) и лицами с АГ I стадии по системе OLGA (р=0,03). Абсолютное содержание NK-клеток было относительно низким у больных АГ III–IV стадий по системе OLGA по сравнению со здоровыми лицами (табл. 3) и пациентами с атрофией I стадии по системе OLGA (р2-4=0,047; р2-5=0,003). Это имеет важное значение в связи с тем, что натуральные киллеры обладают противоопухолевой активностью [11]. Данная ассоциация соответствует логике каскада Корреа и указывает на то, что риск рака желудка повышается у пациентов с выраженным АГ, подтверждая эффективность системы OLGA для определения риска развития рака желудка.

34-2.jpg (199 KB)

CD19 представляет собой специфичный для B-лимфоцитов антиген. B-лимфоциты являются главными клетками, обеспечивающими гуморальный иммунитет путем трансформации в плазматические клетки, которые продуцируют антитела. Помимо продукции антител В-лимфоциты превращаются в B-клетки памяти, выступать в качестве антигенпрезентирующих клеток, продуцировать цитокины и т.д. [12]. Относительное содержание CD19+-клеток было повышено в крови у больных АГ III–IV стадий по системе OLGA по сравнению со здоровыми лицами (табл. 3) и пациентами с атрофией I стадии по системе OLGA (р2-4=0,03; р2-5=0,007). При этом по абсолютному содержанию этих клеток достоверных различий у исследуемых групп выявлено не было. Это может быть обусловлено тем, что вследствие угнетения Т-клеточного звена иммунитета увеличивается относительная доля В-лимфоцитов без существенного изменения их абсолютного содержания.

Обсуждение

Следует подчеркнуть, что механизмы развития рака желудка до настоящего времени остаются недостаточно ясными [13]. На развитие патологии влияют три основные группы факторов: восприимчивость и реакция макроорганизма, условия окружающей среды и свойства бактерии H. pylori [14]. Некоторые штаммы H. pylori характеризуются повышенной выживаемостью, способностью к адгезии, что увеличивает повреждение клеток эпителия желудка и позволяет уклоняться от иммунного ответа макроорганизма [15]. После адгезии H. pylori нарушают внутриклеточные процессы в эпителии, вызывая воспаление и эпигенетические модификации [16]. Ответ организма хозяина сопровождается привлечением иммунных клеток в очаг воспаления, выделением ими цитокинов и при определенных условиях – образованием активных форм кислорода, которые приводят к оксидативному стрессу, способствуя повреждению ДНК и канцерогенезу [17]. В инфицированных H. pylori клетках возможен запуск процессов, препятствующих активации ответа иммунной и антиоксидантной систем организма хозяина [18, 19].

Несмотря на определенные достижения и многочисленные международные рекомендации, принятые в последнее время [20–22], ответа на вопрос, почему рак желудка возникает только у небольшой группы лиц с АГ, нет до настоящего времени. Рационально считать, что повышение эффективности профилактики рака желудка возможно при определении факторов, влияющих на прогрессирование атрофии и метаплазии в дисплазию и рак [21–23]. Возникновение изменений иммунного статуса и оксидативного стресса может иметь важное значение в определении выраженности предраковых изменений и установлении риска развития онкологического заболевания, что в свою очередь будет способствовать и разработке нового направления диагностических и лечебно-профилактических мероприятий.

Заключение

Таким образом, у больных хроническим АГ III–IV стадий по системе OLGA по сравнению со здоровыми лицами отмечалось угнетение Т-клеточного звена иммунитета, проявившееся в снижении абсолютного количества лейкоцитов и лимфоцитов; уменьшении абсолютного и относительного содержания зрелых Т-лимфоцитов, CD4+-клеток, иммунорегуляторного индекса (CD4+/CD8+) и NK-клеток. Нарушение клеточного звена иммунитета было ассоциировано с увеличением стадии атрофии по системе OLGA. В целом эти данные позволяют считать, что комбинация применения морфологической системы OLGA с определением иммунных показателей повышает возможность стратификации АГ по определению риска развития рака желудка.


Литература


1. Gupta S., Tao L., Murphy J.D., et al. Race/Ethnicity-, Socioeconomic Status-, and Anatomic Subsite-Specific Risks for Gastric Cancer. Gastroenterology. 2019;156(1):59–62. Doi: 10.1053/j.gastro.2018.09.045.


2. Venerito M., Link A., Rokkas T., Malfertheiner P. Review: Gastric cancer-Clinical aspects. Helicobacter. 2019;24(1):e12643. Doi: 10.1111/hel.12643.


3. Pilleron S., Sarfati D., Janssen-Heijnen M., et al. Global cancer incidence in older adults, 2012 and 2035: A population-based study. Int J Cancer. 2019;144(1):49–58. Doi: 10.1002/ijc.31664.


4. Sugano K. Effect of Helicobacter pylori eradication on the incidence of gastric cancer: a systematic review and meta-analysis. Gastric Cancer. 2019;22(3):435–45. Doi: 10.1007/s10120-018-0876-0.


5. Kaji K., Hashiba A., Uotani C., et al. Grading of Atrophic Gastritis is Useful for Risk Stratification in Endoscopic Screening for Gastric Cancer. Am J Gastroenterol. 2019;114(1):71–9. Doi: 10.1038/s41395-018-0259-5.


6. Rugge M., Sacchi D., Graham D.Y., Genta R.M. Secondary prevention of gastric cancer: merging the endoscopic atrophic border with OLGA staging. Gut. 2019 Jun 11. Doi: 10.1136/gutjnl-2019-319107.


7. Rugge M., Sugano K., Scarpignato C., et al. Gastric cancer prevention targeted on risk assessment: Gastritis OLGA staging. Helicobacter. 2019;24(2):e12571. Doi: 10.1111/hel.12571.


8. Kuhns M.S., Badgandi H.B. Piecing together the family portrait of TCR-CD3 complexes. Immunol Rev. 2012;250(1):120–43. Doi: 10.1111/imr.12000.


9. Zhu J., Paul W.E. Heterogeneity and plasticity of T helper cells. Cell Res. 2010;20(1):4–12. Doi: 10.1038/cr.2009.138.


10. Kikete S., Chu X., Wang L., Bian Y. Endogenous and tumour-derived microRNAs regulate cross-presentation in dendritic cells and consequently cytotoxic T cell function. Cytotechnology. 2016;68(6):2223–33. Doi: 10.1007/s10616-016-9975-0.


11. Sharma P., Kumar P., Sharma R. Natural KillerCells – Their Role in Tumour Immunosurveillance. J Clin Diagn Res. 2017;11(8):BE01–BE05. Doi: 10.7860/JCDR/2017/26748.10469.


12. Hoffman W., Lakkis F.G., Cells B. Antibodies, and More. Clin J Am Soc Nephrol. 2016;11(1):137–54. Doi: 10.2215/CJN.09430915.


13. Агеева Е.С., Штыгашева О.В., Рязанцева Н.В., Цуканов В.В. Молекулярно-генетические факторы, влияющие на исход инфицирования Helicobacter pylori у жителей Республики Хакасия. Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. 2010;20(4):16–21.


14. McMahon B.J., Bruce M.G., Koch A., et al. The diagnosis and treatment of Helicobacter pylori infection in Arctic regions with a high prevalence of infection: Expert Commentary. Epidemiol Infect. 2016;144(2):225–33. Doi: 10.1017/S0950268815001181.


15. Агеева Е.С., Штыгашева О.В., Цуканов В.В., Рязанцева Н.В. Иммунологические особенности течения гастродуоденальной патологии у жителей Хакасии. Иммунология. 2009;30(3):162–64.


16. Cappellesso R., Fassan M., Hanspeter E., et al. HER2 status in gastroesophageal cancer: a tissue microarray study of 1040 cases. Hum Pathol. 2015;46(5):665–72. Doi: 10.1016/j.humpath.2015.02.007.


17. Цуканов В.В., Васютин А.В., Тонких Ю.Л. и др. Иммунологические аспекты патогенеза атрофического гастрита. Врач. 2019;30(5):47–50. Doi: 10.29296/25877305-2019-05-08.


18. Buommino E., Donnarumma G., Manente L., et al. The Helicobacter pylori protein HspB interferes with Nrf2/Keap1 pathway altering the antioxidant response of Ags cells. Helicobacter. 2012;17(6):417–25. Doi: 10.1111/j.1523-5378.2012.00973.x.


19. Цуканов В.В. Смирнова О.В., Каспаров Э.В. и др. Изменения показателей прооксидантной и антиоксидантной систем в плазме крови у мужчин при атрофическом гастрите и раке желудка. Терапевтический архив. 2018;90(2):24–7. Doi: 10.26442/terarkh201890224-27.


20. Pimentel-Nunes P., Libânio D., Marcos-Pinto R., et al. Management of epithelial precancerous conditions and lesions in the stomach (MAPS II): European Society of Gastrointestinal Endoscopy (ESGE), European Helicobacter and Microbiota Study Group (EHMSG), European Society of Pathology (ESP), and Sociedade Portuguesa de Endoscopia Digestiva (SPED) guideline update 2019. Endoscopy. 2019;51(4):365–88.


21. Sugano K., Tack J., Kuipers E.J., et al. Kyoto global consensus report on Helicobacter pylori gastritis. Gut. 2015;64(9):1353–67. Doi: 10.1136/gutjnl-2015-309252.


22. Malfertheiner P., Megraud F., O’Morain C.A., et al. Management of Helicobacter pylori infection-the Maastricht V/Florence Consensus Report. Gut. 2017;66(1):6–30. Doi: 10.1136/gutjnl-2016-312288.


23. Бордин Д.С., Янова О.Б., Абдулхаков Р.А. и др. Европейский регистр Helicobacter pylori (протокол Hp-EuReg): первые результаты российскихцентров. Терапевтический архив. 2016;88(2):33–8. Doi: 10.17116/terarkh201688233-38.


Об авторах / Для корреспонденции


Автор для связи: В.В. Цуканов, д.м.н., профессор, зав. клиническим отделением патологии пищеварительной системы у взрослых и детей НИИ медицинских проблем Севера, Федеральный исследовательский центр «Красноярский научный центр Сибирского отделения Российской академии наук» (ФИЦ КНЦ СО РАН), Красноярск, Россия; e-mail: gastro@impn.ru
Адрес: 660022, Россия, Красноярск, ул. Партизана Железняка, 3Г 


ORCID/Scopus Author ID/ResearcherID:
В.В. Цуканов, ORCID: https://orcid.org/0000-0002-9980-2294; Scopus Author ID: 7004057447; ResearcherID: E-6638-2015
А.В. Васютин, ORCID: https://orcid.org/0000-0002-6481-3196; Scopus Author ID: 55891923200; ResearcherID: E-6657-2015 
Ю.Л. Тонких, ORCID: https://orcid.org/0000-0001-7518-1895; Scopus Author ID: 37033139400; ResearcherID: S-5608-2016
О.В. Смирнова, ORCID: https://orcid.org/0000-0003-3992-9207; ResearcherID: C-2722-2018
А.А. Синяков, ORCID: https://orcid.org/0000-0002-4474-1893; ResearcherID: K-2967-2018


Бионика Медиа