Роль герпесвирусных инфекций человека в патогенезе иммуновоспалительных дерматозов. Обзорная статья, часть I
Евдокимов Е.Ю., Свечникова Е.В., Домонова Э.А., Понежева Л.О., Ржевская Е.В.
Вирусы герпеса человека, являясь одними из древнейших патогенов, представляют собой значительную проблему для здоровья. Их уникальная способность поражать разнообразные органы и системы, а также персистировать в организме обуславливает хронический характер инфекции. Проникновение вирусов чаще всего происходит через поврежденные кожные покровы и слизистые оболочки, запуская каскад иммунных реакций, начиная с врожденного иммунитета в коже и распространяясь на другие звенья иммунной системы по мере репликации вируса. Особый интерес представляет собой дифференцированный иммунный ответ при моноинфекции вирусом простого герпеса по сравнению с коинфекциями, вызванными несколькими типами герпесвирусов.
Настоящий обзор посвящен анализу взаимосвязи между латенцией и персистенцией вирусов герпеса человека и особенностями иммунного ответа у пациентов с воспалительными дерматозами, обостряющимися на фоне рецидивов герпесвирусных инфекций. Особое внимание уделено роли вирусов простого герпеса 1 и 2 типов в модуляции иммунных реакций и воспалительных процессов. В статье показано, что рецидивы герпесвирусных инфекций и обострения воспалительных дерматозов могут быть связаны с общими регуляторными путями иммунного ответа. Полученные данные подчеркивают необходимость дальнейших исследований для разработки новых терапевтических подходов к лечению этих взаимосвязанных патологий.
Для цитирования: Евдокимов Е.Ю., Свечникова Е.В., Домонова Э.А., Понежева Л.О., Ржевская Е.В. Роль герпесвирусных инфекций человека в патогенезе иммуновоспалительных дерматозов. Обзорная статья, часть I. Фарматека. 2026;33(4):117-126. DOI:
https://dx.doi.org/10.18565/pharmateca.2026.4.117-126
Вклад авторов: Е.Ю. Евдокимов – анализ имеющихся данных по герпесвирусным инфекциям, написание статьи. Е.В. Свечникова – редактирование и оформление статьи, внесение правок. Э.А. Домонова – написание блока статьи, связанного с этиологией и эпидемиологиейгерпесирусов человека. Л.О. Понежева – написание блока статьи, связанного с иммунологией герпесирусов человека. Е.В. Ржевская – редактирование и оформление статьи.
Конфликт интересов: Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи.
Финансирование: Работа выполнена без спонсорской поддержки.
Ключевые слова
вирусы герпеса человека
воспалительные дерматозы
Список литературы
1. Yapijakis C. Hippocrates of Kos, the father of clinical medicine, and Asclepiades of Bithyn-ia, the father of molecular medicine. Review. InVivo. 2009 Jul-Aug;23(4):507-14.
2. Dotto-Maurel A., Arzul I., Morga B., Chevignon G. Herpesviruses: overview of systematics, genomic complexity and life cycle. Virol J. 2025 May 22;22(1):155. https://dx.doi.org/10.1186/s12985-025-02779-7
3. Сайдуллаева И.С., Тихомиров Д.С., Дроков М.Ю., Туполева Т.А. Вирус герпеса человека 6-го типа (Orthoherpesviridae: Roseolovirus): особенности эпидемиологии и диа-гностики. Вопросы вирусологии. 2024;69(1):22-30.
4. Cevenini A., De Antonellis P., Mazzarelli L.L., et al. Lytic or Latent Phase in Human Cyto-megalovirus Infection: An Epigenetic Trigger. Int J Mol Sci. 2025;26(23):11554. https://doi.org/10.3390/ijms262311554
5. Gatherer D., Depledge D.P., Hartley C.A., et al. ICTV Virus Taxonomy Profile: Herpesviri-dae 2021. J Gen Virol. 2021 Oct;102(10):001673. https://dx.doi.org/10.1099/jgv.0.001673
6. Клинические рекомендации. Простой герпес (ПГ) у взрослых. Разработчик клинической рекомендации: Национальная ассоциация специалистов по инфекционным болезням имени академика В.И. Покровского (НАСИБ); Общероссийская общественная организация «Национальный альянс дерматовенерологов и косметологов». Одобрено Научно-практическим Советом МЗ РФ 2025 г.
7. Shah H.A., Meiwald A., Perera C., et al. Global Prevalence of Varicella-Associated Compli-cations: A Systematic Review and Meta-Analysis. Infect Dis Ther. 2024 Jan;13(1):79-103. https://dx.doi.org/10.1007/s40121-023-00899-7
8. Whitley R.J. Herpesviruses. In: Baron S., editor. Medical Microbiology. 4th edition. Galves-ton (TX): University of Texas Medical Branch at Galveston; 1996. Chapter 68. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK8157/
9. Hoover K., Higginbotham K. Epstein-Barr Virus.
10. Mamimandjiami A.I., Engone-Ondo J.-D., Moussavou-Boundzanga P., et al. Kaposi’s Sar-coma: A Non-Communicable Outcome Mainly Prompted by Communicable Diseases in Sub-Saharan Africa. Int J Mol Sci. 2025;26(20):10198. https://doi.org/10.3390/ijms262010198
11. Neugebauer E., Walter S., Tan J., et al. Herpesviruses mimic zygotic genome activation to promote viral replication. Nat Commun. 2025 Jan 16;16(1):710. https://dx.doi.org/10.1038/s41467-025-55928-5 Erratum in: Nat Commun. 2025 Mar 5;16(1):2211. https://dx.doi.org/10.1038/s41467-025-57313-8
12. Shahnazaryan, D., Khalil, R., Wynne C. et al. Herpes simplex virus 1 targets IRF7 via ICP0 to limit type I IFN induction. Sci Rep. 2020;10:22216. https://doi.org/10.1038/s41598-020-77725-4
13. Chen Y.C., Li H., Martin-Caraballo M., Hsia S.V. Establishing a Herpesvirus Quiescent In-fection in Differentiated Human Dorsal Root Ganglion Neuronal Cell Line Mediated by Mi-cro-RNA Overexpression. Pathogens. 2022 Jul 16;11(7):803. https://dx.doi.org/10.3390/pathogens11070803
14. Rivas T., Goodrich J.A., Kugel J.F. The Herpes Simplex Virus 1 Protein ICP4 Acts as both an Activator and a Repressor of Host Genome Transcription during Infection. Mol Cell Biol. 2021 Sep 24;41(10):e0017121. https://dx.doi.org/10.1128/MCB.00171-21
15. St Leger A.J., Koelle D.M., Kinchington P.R., Verjans G.M.G.M. Local Immune Control of Latent Herpes Simplex Virus Type 1 in Ganglia of Mice and Man. Front Immunol. 2021 Sep 15;12:723809. https://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2021.723809
16. Long X., Yang Z., Li Y., et al. BRLF1-dependent viral and cellular transcriptomes and tran-scriptional regulation during EBV primary infection in B lymphoma cells. Genomics. 2021 Jul;113(4):2591-2604. https://dx.doi.org/10.1016/j.ygeno.2021.05.039
17. Bentz G.L., Liu R., Hahn A.M., et al. Epstein-Barr virus BRLF1 inhibits transcription of IRF3 and IRF7 and suppresses induction of interferon-beta. Virology. 2010 Jun 20;402(1):121-8. https://dx.doi.org/10.1016/j.virol.2010.03.014
18. Adamson C.S., Nevels M.M. Bright and Early: Inhibiting Human Cytomegalovirus by Tar-geting Major Immediate-Early Gene Expression or Protein Function. Viruses. 2020 Jan 16;12(1):110. https://dx.doi.org/10.3390/v12010110
19. Stinski M.F., Meier J.L. Immediate–early viral gene regulation and function. In: Arvin A., Campadelli-Fiume G., Mocarski E., et al., editors. Human Herpesviruses: Biology, Therapy, and Immunoprophylaxis. Cambridge: Cambridge University Press; 2007. Chapter 17. Avail-able from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK47383/
20. Wen K.W., Wang L., Menke J.R., Damania B. Cancers associated with human gam-maherpesviruses. FEBS J. 2022 Dec;289(24):7631-7669. https://dx.doi.org/10.1111/febs.16206
21. Murata T. Human Herpesvirus and the Immune Checkpoint PD-1/PD-L1 Pathway: Disorders and Strategies for Survival. Microorganisms. 2021;9(4):778. https://doi.org/10.3390/microorganisms9040778
22. Le Hars M., Joussain C., Jégu T., Epstein A.L. Non-replicative herpes simplex virus genomic and amplicon vectors for gene therapy - an update. Gene Ther. 2025 May;32(3):173-183. doi: 10.1038/s41434-024-00500-x
23. Nalwoga A., Roshan R., Moore K. et al. Kaposi’s sarcoma-associated herpesvirus T cell re-sponses in HIV seronegative individuals from rural Uganda. Nat Commun. 2021;12:7323. https://doi.org/10.1038/s41467-021-27623-8
24. Landmeier S., Altvater B., Pscherer S. et al. Activated human gammadelta T cells as stimula-tors of specific CD8+ T-cell responses to subdominant Epstein Barr virus epitopes: potential for immunotherapy of cancer. J Immunother. 2009 Apr;32(3):310-21. https://dx.doi.org/10.1097/CJI.0b013e31819b7c30
25. DuRaine G., Wisner T.W., Johnson D.C. Characterization of the Herpes Simplex Virus (HSV) Tegument Proteins That Bind to gE/gI and US9, Which Promote Assembly of HSV and Transport into Neuronal Axons. J Virol. 2020 Nov 9;94(23):e01113-20. https://dx.doi.org/10.1128/JVI.01113-20
26. Lenart M., Działo E., Kluczewska A., et al. miRNA Regulation of NK Cells Antiviral Re-sponse in Children With Severe and/or Recurrent Herpes Simplex Virus Infections. Front Immunol. 2021 Jan 25;11:589866. https://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2020.589866
27. Penner I., Krämer N., Hirsch J., et al. Deletion of the Human Cytomegalovirus US2 to US11 Gene Family Members Impairs the Type-I Interferon Response. Viruses. 2025;17(3):426. https://doi.org/10.3390/v17030426
28. Mariuzza R.A., Singh P., Karade S.S., et al. Recognition of Self and Viral Ligands by NK Cell Receptors. Immunol Rev. 2025 Jan;329(1):e13435. https://dx.doi.org/10.1111/imr.13435
29. Meng W., Han SC., Li CC. et al. Multifunctional viral protein γ34.5 manipulates nucleolar protein NOP53 for optimal viral replication of HSV-1. Cell Death Dis. 2018;9:103 https://doi.org/10.1038/s41419-017-0116-2
30. Suraweera C.D., Hinds M.G., Kvansakul M. Structural Insight into KsBcl-2 Mediated Apop-tosis Inhibition by Kaposi Sarcoma Associated Herpes Virus. Viruses. 2022;14(4):738. https://doi.org/10.3390/v14040738
31. Yujie Ren et al. Human cytomegalovirus UL36 inhibits IRF3-dependent immune signaling to counterbalance its immunoenhancement as apoptotic inhibitor. Sci. Adv. 2023;9:eadi6586. https://dx.doi.org/10.1126/sciadv.adi6586
32. Broussard G., Damania B. KSHV: Immune Modulation and Immunotherapy. Front Immu-nol. 2020 Feb 7;10:3084. doi: 10.3389/fimmu.2019.03084
33. Oliver S.L. The Structures and Functions of VZV Glycoproteins. Curr Top MicrobiolIm-munol. 2023;438:25-58. https://dx.doi.org/10.1007/82_2021_243
34. Ning Y., Huang Y., Wang M., et al. Alphaherpesvirus glycoprotein E: A review of its inter-actions with other proteins of the virus and its application in vaccinology. Front Microbiol. 2022 Aug 4;13:970545. https://dx.doi.org/10.3389/fmicb.2022.970545
35. BahojbMahdavi S.Z., Jebelli A., Aghbash P.S., et al. A comprehensive overview on the crosstalk between microRNAs and viral pathogenesis and infection. Med Res Rev. 2025 Mar;45(2):349-425. https://dx.doi.org/10.1002/med.22073
36. Labetoulle M., Boutolleau D., Burrel S., et al. Herpes simplex virus, varicella-zoster virus and cytomegalovirus keratitis: Facts for the clinician. Ocul Surf. 2023 Apr;28:336-350. https://dx.doi.org/10.1016/j.jtos.2021.07.002
37. Nie J., Zhou L., Tian W. et al. Deep insight into cytokine storm: from pathogenesis to treat-ment. Sig Transduct Target Ther. 2025;10:112. https://doi.org/10.1038/s41392-025-02178-y
38. Sutter J., Hope J.L., Wigdahl B., Miller V., Krebs F.C. Immunological Control of Herpes Simplex Virus Type 1 Infection: A Non-Thermal Plasma-Based Approach. Viruses. 2025;17(5):600. https://doi.org/10.3390/v17050600
39. Атажахова М.Г., Чудилова Г.А., Ломтатидзе Л.В., Поезжаев Е.А. Вариативность изменений про- и противовоспалительных цитокинов на фоне дефицита IFNα и IFNγ у пациентов с постковидным синдромом, ассоциированным с активацией хронических герпесвирусных инфекций. Инфекция и иммунитет. 2024;14(3):488-494.
40. Соломай Т.В., Семененко Т.А., Каражас Н.В. др. Особенности изменения показателей иммунного статуса лиц с активным и латентным формами герпесвирусных инфекций. Пермский медицинский журнал (сетевое издание Perm Medical Journal). 2021;38(1):46-63.
41. Wang H., Zhang N., Xu R., et al. The PD-1/PD-L1 pathway and Epstein-Barr virus. Eur J Med Res. 2025 Jun 18;30(1):486. https://dx.doi.org/10.1186/s40001-025-02694-1
42. Соломай Т.В., Семененко Т.А., Ведунова С.Л. и др. Роль активной герпесвирусной инфекции в формировании атопического дерматита и псориаза. Сибирский научный медицинский журнал. 2022;42(3):94-102.
[Solomai T.V., Semenenko T.A., Vedunova S.L., et al. The role of active herpesvirus infection in the development of atopic dermatitis and psoriasis. Siberian Scientific Medical Journal. 2022;42(3):94-102. (In Russ.)].
43. Ricchi F., Caramaschi S, Sala A., et al. Candida albicans as a Trailblazer for Herpes Simplex Virus-2 Infection Against an In Vitro Reconstituted Human Vaginal Epithelium. Microor-ganisms. 2025;13(4):905. https://doi.org/10.3390/microorganisms13040905
44. Espinoza Urzua I., Vidal Vidal M.I., Vega Solano M., et al. Skin Barrier Dysfunction in Chronic Dermatoses: From Pathophysiology to Emerging Therapeutic Strategies. Cureus. 2025 Jun 28;17(6):e86937. https://dx.doi.org/10.7759/cureus.86937
45. Su D., Han L., Shi C., et al. An updated review of HSV-1 infection-associated diseases and treatment, vaccine development, and vector therapy application. Virulence. 2024 Dec;15(1):2425744. https://dx.doi.org/10.1080/21505594.2024.2425744
46. Glasebach H., Denzinger L., Rupp S., Burger-Kentischer A. Human epidermis models demonstrate mediator role of TLR2 and TLR3 for psoriatic inflammation. Front Med (Lau-sanne). 2025 Sep 9;12:1663279. https://dx.doi.org/10.3389/fmed.2025.1663279
47. Tamagawa-Mineoka R. Toll-like receptors: their roles in pathomechanisms of atopic dermati-tis. Front Immunol. 2023 Sep 5;14:1239244. https://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2023.1239244
48. Huang C., Li W., Ren X., et al. The Crucial Roles and Research Advances of cGAS-STING Pathway in Cutaneous Disorders. Inflammation. 2023 Aug;46(4):1161-1176. https://dx.doi.org/10.1007/s10753-023-01812-7
49. Xu T., Zhong X., Luo N., et al. Review of Excessive Cytosolic DNA and Its Role in AIM2 and cGAS-STING Mediated Psoriasis Development. Clin Cosmet Investig Dermatol. 2024 Oct 22;17:2345-2357. https://dx.doi.org/10.2147/CCID.S476785
50. Cai M., Liao Z., Zou X., et al. Herpes Simplex Virus 1 UL2 Inhibits the TNF-α-Mediated NF-κB Activity by Interacting With p65/p50. Front Immunol. 2020 May 13;11:549. https://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2020.00549
51. Liu A.R., Sarkar N., Cress J.D., et al. NF-κB c-Rel is a critical regulator of TLR7-induced in-flammation in psoriasis. EBioMedicine. 2024 Dec;110:105452. https://dx.doi.org/10.1016/j.ebiom.2024.105452
52. Li D., Wu M. Pattern recognition receptors in health and diseases. Signal Transduct Target Ther. 2021 Aug 4;6(1):291. doi: 10.1038/s41392-021-00687-0
53. Liu Y., Chen L., Liu W., et al. Cepharanthine Suppresses Herpes Simplex Virus Type 1 Rep-lication Through the Downregulation of the PI3K/Akt and p38 MAPK Signaling Pathways. Front Microbiol. 2021 Dec 9;12:795756. https://dx.doi.org/10.3389/fmicb.2021.795756
54. Guo J., Zhang H., Lin W. et al. Signaling pathways and targeted therapies for psoriasis. Sig Transduct Target Ther. 2023;8:437. https://doi.org/10.1038/s41392-023-01655-6.
55. Hu X., Zeng Q., Xiao J., et al. Herpes Simplex Virus 1 Induces Microglia Gasdermin D-Dependent Pyroptosis Through Activating the NLR Family Pyrin Domain Containing 3 In-flammasome. Front Microbiol. 2022 Mar 21;13:838808. https://dx.doi.org/10.3389/fmicb.2022.838808
56. Li L., Liu J., Lu J., et al. Interventions in cytokine signaling: novel horizons for psoriasis treatment. Front Immunol. 2025 Apr 15;16:1573905. https://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2025.1573905
57. Scheib N., Tiemann J., Becker C., et al. The Dendritic Cell Dilemma in the Skin: Between Tolerance and Immunity. Front Immunol. 2022 Jun 28;13:929000. https://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2022.929000
58. Behr N.J., Pierre S., Ickelsheimer T. et al. High content imaging shows distinct macrophage and dendritic cell phenotypes for psoriasis and atopic dermatitis. Sci Rep. 2025;15:18904. https://doi.org/10.1038/s41598-025-99727-w
59. Wang L., Liu R., Tang Y., et al. Advances in Psoriasis Research: Decoding Immune Circuits and Developing Novel Therapies. Int J Mol Sci. 2025;26(18):9233. https://doi.org/10.3390/ijms26189233
60. Калантар Неестанаки М., Мехдипур А. Взаимодействия между вирусными и бактериальными патогенами в развитии инфекций: обзор с акцентом на вирус простого герпеса. Инфекция и иммунитет. 2025;15(3):465-475.
61. Dias de Oliveira N.F., Santi C.G., Maruta C.W., Aoki V. Plasmacytoid dendritic cells in dermatology. An Bras Dermatol. 2021 Jan-Feb;96(1):76-81. https://dx.doi.org/10.1016/j.abd.2020.08.006
62. Ngo C., Garrec C., Tomasello E. et al. The role of plasmacytoid dendritic cells (pDCs) in immunity during viral infections and beyond. Cell Mol Immunol. 2024;21:1008–1035. https://doi.org/10.1038/s41423-024-01167-5
63. Zhang J., Xu X., Duan S., et al. Characterization of the Immunologic Phenotype of Dendritic Cells Infected With Herpes Simplex Virus 1. Front Immunol. 2022 Jul 5;13:931740. https://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2022.931740
64. Domínguez-Díaz C., Varela-Trinidad G.U., Muñoz-Sánchez G., et al. To Trap a Pathogen: Neutrophil Extracellular Traps and Their Role in Mucosal Epithelial and Skin Diseases. Cells. 2021 Jun 11;10(6):1469. https://dx.doi.org/10.3390/cells10061469
65. Afonina I.S., Van Nuffel E., Beyaert R. Immune responses and therapeutic options in psoria-sis. Cell Mol Life Sci. 2021 Mar;78(6):2709-2727. https://dx.doi.org/10.1007/s00018-020-03726-1
66. Ouyang K., Oparaugo N., Nelson A.M., Agak G.W. T Cell Extracellular Traps: Tipping the Balance Between Skin Health and Disease. Front Immunol. 2022 Jun 20;13:900634. https://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2022.900634
67. Сорокина Е.В., Бишева И.В. Роль клеток врожденной иммунной системы при псориазе. Вестник дерматологии и венерологии. 2022;98(5):59-64.
Об авторах / Для корреспонденции
Евгений Юрьевич Евдокимов, д.м.н., ведущий науч. сотр. клинического отдела инфекционной патологии, Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии Роспотребнадзора; врач-дерматовенеролог, Поликлиника № 1 Управления делами Президента РФ, Москва, Россия; ORCID: https://orcid.org/0000-0003-2694-8900Елена Владимировна Свечникова, д.м.н., профессор кафедры «Кожные и венерические болезни с курсом косметологии», Российский биотехнологический университет (РОСБИОТЕХ), кафедра «Кожные и венерические болезни с курсом косметологии», Москва; зав. отделением дерматовенерологии и косметологии, Поликлиника № 1 Управления делами Президента РФ, Москва, Россия; elene-elene@bk.ru, ORCID: https://orcid.org/0000-0003-2694-8900 (автор, ответственный за переписку)
Эльвира Алексеевна Домонова, д.м.н., зав. лабораторией молекулярной диагностики и эпидемиологии оппортунистических инфекций отдела молекулярной диагностики и эпидемиологии, Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии Роспотребнадзора, Москва, Россия; ORCID: http://orcid.org/0000-0001-8262-3938
Лиана Оскаровна Понежева, к.м.н., врач аллерголог-иммунолог, Городская поликлиника № 180 ДЗМ, Москва, Россия; ORCID:
https://orcid.org/0000-0001-9459-8143
Елена Васильевна Ржевская, к.м.н., Главный врач, Поликлиника № 1 Управления делами Президента РФ, Москва, Россия; ORCID:
https://orcid.org/0000-0001-7194-8219
